カナダ.Aurora 1500A
心筋、平滑筋微細組織試験システム
製品の概要:
1500A高度に統合されたワンストップ型テストシステムであり、その設計理念は研究者に微細組織と筋肉の力学的性能を制御、測定させ、高い信頼性と再現可能な基礎の下で微細組織の各種力学的関係とパラメータを正確に測定させる簡単な方法を提供することである、例えば:長さ-テンション-収縮速度、仕事環、硬度など。
Aurora 1500A心筋、平滑筋微細組織試験システムの技術特徴: √ 完全な試験システムであり、微細組織のための制御可能な温度浴槽プラットフォーム装置を備えている √ 高速なデータ収集と分析ソフトウェア:WindowsまたはLinuxオペレーティングシステム、力度と長さを測定、制御することができる √標準顕微鏡と倒置顕微鏡と互換性があり、私たちの筋小節間隔長さ測定ソフトウェアを配置することができる √測定された力値ピーク:0.5mN終了1000Mn,解像度が0.01μN |
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1500A心筋、平滑筋微細組織試験システムにより、研究者は高信頼性と再現可能な基礎の下で微細組織の様々な力学的関係とパラメータを正確に測定することができ、例えば:長さ-テンション-収縮速度、仕事環、硬度。無制限の配置調整空間を与え、3種類の異なるグループは多機能性を備え、細かい組織の力と長さを正確に測定することができる。各組合せの実験プラットフォーム装置はマイクロメートル級を内蔵しているXYZ位置調整器が私たちを調整する400Aシリーズの力センサー、322C高速長さ操作器と300Cデュアルモードセンサの位置。
技術原理:
筋肉や組織を浴槽の縁を透過する独特のスリットと力センサのカンチレバーを連結することにより、適切な上部カバーを浴槽の頂部に置くことにより、全体的な設計は人工筋肉構造物や酸素消費実験に応用する理想的な装置となる—酸素消費実験には閉鎖的な環境が必要だ。システムの動作下では、サンプルの力や長さを測定したり制御したりすることができ、簡単な張力から他の複雑な力学的性能まで測定することができます。信号収集とデータ管理はソフトウェアと標準化方案の間の協力によって完成することができて、複雑な実験を簡単で直接的な測定に転化することができます。また、システムは金属製の台座を提供し、試験プラットフォーム装置をその上に置くことができ、保管が便利であると同時に、プラットフォーム装置を台座と(立体または反転)顕微鏡間の移動はより安全で便利である。
応用分野:
ü 筋肉生理学者
ü スポーツ科学者
ü 代謝&心血管学者
ü バイオエンジニアリング&生物学
ü 遺伝子学者
ü 神経科学者
ü 薬理&生化学者
ü 比較生物学者
ü 老年学者
ü 筋肉機能の研究に関連する
応用事例
課題:
2008年、ウィスコンシン大学のCarter Ralphe博士は酸素密封環境で組織構造中の力と収縮性を測定しようとした。カスタムソリューションを開発する時間がなく、Ralphe博士は設備サプライヤーの助けを求めた。残念なことに、彼は他のメーカーから仕事のない設備を作ろうとするために多くの時間とお金を浪費した。別のメーカーは最終的に返金したが、製品を回収することに同意するためにより多くの時間と労力を費やした。
ソリューション:
Ralphe博士向けAurora Scientificカスタマイズされた酸素シールカバーの設計について問い合わせました。このシールカバーは私たちの801Cの改良版とともに使用されます。再設計により、この装置は酸素消費モードまたは通常の浴槽構成で動作することができるようになった。カスタムルームは簡単に統合することもできますAurora Scientific業界をリードする400コンパクトで洗練された構造をテストするために必要な感度を持つシリーズセンサ。
結果:
この機器を利用して、Ralphe博士は彼の実験を成功させ、影響力のある結果を発表し続けることができる。彼は現在2つの単位を持ち、研究能力を拡大している。Ralphe博士は他の研究者にもこの装置を推薦し、彼ら自身がすでに発表されている。801C-300これからは標準的な修正となり、私たちの1500Aシリーズの小型完全筋肉テストシステムの一部。
1500A仕様パラメータ: 322C-I高速長制御器 400A高速反応と高分解能の力センサ 600A完全なデータ収集とデジタル制御システム 801Cミクロ組織試験プラットフォーム装置 |
参考文献リスト
Norden, Diana M. et al. “Tumor growth increases neuroinflammation, fatigue and depressive-like behavior prior to alterations in muscle function.” Brain, Behavior, and Immunity 43 (2015): 76-85.
Tangney, Jared R. et al. “Timing and magnitude of systolic stretch affect myofilament activation and mechanical work.” American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology 307.3 (2014): H353-H360.
Gharanei, Mayel. “Investigation into the cardiotoxic effects of doxorubicin on contractile function and the protection afforded by cyclosporin A using the work-loop assay.” Toxicology in Vitro 28 (2014): 722-731.
Zuo, Li et al. “Low Po2 conditions induce reactive oxygen species formation during contractions in single skeletal muscle fibers.” American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology 304.11 (2013): R1009-R1016.
de Lange, Willem J. et al. “Ablation of cardiac myosin-binding protein-C accelerates contractile kinetics in engineered cardiac tissue.” Journal of General Physiology 141.1 (2013): 73-84.
Tangney, Jared R. “Effects of alterations in sarcomere structure and prestretch timing on cardiac muscle mechanics.” MSc Thesis. University of California San Diego (2012): 1-120.
Zuo, Li, Leonardo Nogueira, and Michael C. Hogan. “Reactive oxygen species formation during tetanic contractions in single isolated Xenopus myofibers.” Journal of Applied Physiology 111.3 (2011): 898-904.
Rhim, Caroline et al. “Effect of MicroRNA Modulation on Bioartificial Muscle Function.” Tissue Engineering: Part A 16.12 (2010): 3589-3597.
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